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酶聯(lián)免疫吸附實驗(ELISA)有助于量化給定樣本中存在的目標量。在進行ELISA實驗,樣本制備是非常重要的,這也覺得實驗成功的關(guān)鍵。
樣本制備完成后,可以分裝并冷凍以便長期保存。建議的儲存條件如下:2-8°C保存5天,-20°C保存6個月,-80°C保存2年。還建議在從存儲中取出樣本時避免反復(fù)凍融循環(huán),因此最好將樣本分裝到較小的份量中保存。
有許多不同的樣本可用于ELISA方法。下面將討論一些最常見的樣本,并提供有關(guān)如何最好地制備每種樣本的一般說明。但是,我們建議遵循每個試劑盒提供的具體說明,因為不同試劑盒的方案可能會略有不同。
血清:不含任何血細胞或凝血因子;它就像沒有纖維蛋白原的血漿。
(a)使用含有促凝劑的血清分離管采集全血樣本。將血液樣本在室溫下靜置30-60分鐘以使其凝固,然后在4°C下放置1-2小時(或2-8°C過夜)以促進完全凝固。
(b)之后,將樣品以1000xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為2500rpm)離心20分鐘。
(c)小心地將上清液(血清)轉(zhuǎn)移到干凈的試管中,避免吸取到下層血細胞和凝塊。血清可以立即用于分析,或在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。
血漿需要使用抗凝劑,具體選擇取決于目標分析物。常用的抗凝劑包括EDTA(常用于血液學檢測)、檸檬酸鈉(常用于凝血功能檢測)和肝素(常用于生化檢測)。
(a)將血液收集到含有相應(yīng)抗凝劑的試管中,立即輕輕顛倒試管5-10次,確保血液與抗凝劑充分混合。
(b)建議在收集樣品后盡快離心,最好在30分鐘內(nèi),具體時間取決于目標分析物。在2-8°C下以1000xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為2500rpm)離心樣品15分鐘。
(c)小心地將上清液(血漿)轉(zhuǎn)移到干凈的試管中,避免吸取到下層血細胞。
(d)血漿可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。
幾乎所有的組織樣本都需要進行勻漿處理,具體方案取決于所提取的組織和目標分析物。為了防止蛋白水解和其他降解過程,通常需要添加適當?shù)牡鞍酌敢种苿┖推渌种苿?/span>
(a)使用無菌的不銹鋼解剖工具解剖組織,并迅速置于冰上以抑制酶活性。
(b)使用預(yù)冷的0.01MPBS緩沖液(pH7.4)輕輕洗滌組織三次,以盡可能去除殘留血液。
(c)稱重組織,然后將其切碎或剪碎。將組織加入適量的勻漿緩沖液(根據(jù)目標分析物和組織類型選擇)中,使用合適的勻漿器(例如,組織研磨器、超聲波破碎儀等)進行勻漿。建議記錄組織與勻漿緩沖液的比例。
(d)將處理后的勻漿以5000xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為6000rpm)離心5分鐘。
(e)小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中。
(f)上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。
一些組織樣本,例如腎臟、肝臟、胰腺和腦組織,含有內(nèi)源性生物素,可能與親和素和鏈霉親和素相互作用,導(dǎo)致假陽性結(jié)果。在分析這些組織樣本時,需要考慮生物素干擾的可能性,并采取相應(yīng)的措施。
為了進行ELISA分析,首先需要裂解細胞以釋放目標蛋白。裂解方法可以是化學方法(例如使用TritonX-100、脫氧膽酸鈉、RIPA、SDS、DTT和尿素等試劑)或物理方法(例如反復(fù)凍融循環(huán)或超聲處理)。選擇哪種方法取決于目標蛋白和下游應(yīng)用,需要根據(jù)具體情況進行優(yōu)化。
(a)對于貼壁細胞,使用胰蛋白酶消化細胞,然后離心收集細胞沉淀,棄去上清液。對于懸浮細胞,直接離心收集細胞沉淀,棄去上清培養(yǎng)基。離心力及時間需根據(jù)細胞類型進行優(yōu)化。
(b)將細胞沉淀重懸于預(yù)冷的PBS中,離心洗滌三次,以去除殘留的培養(yǎng)基和雜質(zhì)。
(c)使用合適的裂解方法裂解細胞。例如,加入預(yù)冷的RIPA裂解液(具體配方...),冰上孵育一段時間(例如30分鐘),并進行渦旋振蕩?;蛘?,進行四次凍融循環(huán)(將樣品置于液氮中快速冷凍,然后在37°C水浴中快速解凍)?;蛘撸褂贸暡ㄆ扑閮x進行超聲處理(具體參數(shù)...)。
(d)以1500xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為3500rpm)離心10分鐘,以去除細胞碎片。
(e)小心地將上清液(細胞裂解物)轉(zhuǎn)移到干凈的試管中。
(f)細胞裂解物可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。
當目標分析物是分泌蛋白時,可以使用細胞培養(yǎng)上清液進行ELISA檢測。
(a)以1000xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為2500rpm)離心20分鐘,以去除細胞碎片和沉淀物。
(b)小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中。
(c)細胞培養(yǎng)上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。
痰液是由呼吸道分泌的粘液,其中可能包含唾液、細胞碎片、細菌、炎癥細胞等。痰液樣本常用于檢測呼吸道感染的病原體。
(a)收集新鮮的痰液樣本到無菌容器中。記錄痰液樣本的體積。
(b)向痰液樣本中加入等體積的0.1%DTT溶液(DTT用于溶解痰液),并在37°C水浴中孵育5分鐘,并定期輕輕混勻。
(c)使用1xPBS將DTT-痰液混合物稀釋至1/2的濃度,并在室溫下繼續(xù)輕輕混勻15-20分鐘。
(d)使用孔徑為XXμm的金屬絲網(wǎng)過濾混合物,以去除較大的雜質(zhì)和粘液塊。
(e)以1500xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為3500rpm)離心10分鐘,使細胞碎片和細菌沉淀。
(f)小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中。
(g)上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。
腦脊液、腹水和支氣管肺泡灌洗液(BALF)等體液樣本的處理方法略有不同,需要根據(jù)具體情況進行調(diào)整。以下是一些通用的指導(dǎo)原則:
(a)腦脊液:
收集新鮮的腦脊液樣本到無菌容器中。
以400xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為1800rpm)離心10分鐘,以去除細胞。
小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中,避免擾動沉淀。
上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。細胞沉淀可以根據(jù)需要進行進一步分析。
(b)腹水:
收集新鮮的腹水樣本到無菌容器中。
以1000xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為2500rpm)離心10分鐘,以去除細胞和雜質(zhì)。
小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中,避免擾動沉淀。
上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。細胞沉淀可以根據(jù)需要進行進一步分析。
(c)支氣管肺泡灌洗液(BALF):
收集新鮮的BALF樣本到無菌容器中。
可選步驟:使用無菌紗布或細胞濾網(wǎng)過濾BALF,以去除粘液和大的組織碎片。
以450xg(例如,使用半徑為10cm的離心機,轉(zhuǎn)速約為2000rpm)離心10分鐘,以去除細胞和雜質(zhì)。
小心地將上清液轉(zhuǎn)移到干凈的試管中,避免擾動沉淀。
上清液可以立即用于分析,也可以在-20°C或-80°C下冷凍保存以備后用。避免反復(fù)凍融。細胞沉淀可以根據(jù)需要進行細胞計數(shù)、分類和進一步分析。
友情提示:以上只是一些通用的指導(dǎo)原則,具體的操作步驟和參數(shù)需要根據(jù)實驗?zāi)康暮蜆颖绢愋瓦M行優(yōu)化。建議查閱相關(guān)文獻或咨詢專業(yè)人士,以確定最佳的處理方法。始終保持無菌操作,以防止樣本污染。
上述是紀寧為大家介紹在進行ELISA實驗時候,常見的樣本制備的方法,樣本制備好壞對ELISA實驗影響非常大,正確的進行樣本制備可以提高實驗效果。